Чем обработать сарай после чумы. Противоэпидемические мероприятия при особо опасных инфекциях. Профилактика холеры, сибирской язвы, чумы и туляремии. Мероприятия по предупреждению заноса возбудителя африканской чумы свиней на территорию ссср

Г.Р.Юсупова к.в.н., начальник НИС КГАВМ им. Н.Э.Баумана.

Установлено, что реакция непрямой гемаггпютинации с использованием антительного эритроцитарного диагностикума позволяет определить вирусоицидное действие химических веществ из различных классов

Классическая чума свиней (КЧС) - высококонтагиозная инфекционная болезнь, характеризующаяся лихорадшй; поражением кровеносной и кроветворной систем, крупозным воспалением легких и крупозно-дифтерическим воспалением толстого отдела кишечника,

В настоящее время КЧС встречается повсеместно, за исключением США, Канады, Австралии, Исландии, Ирландии, Новой Зеландии, Норвегии, Швеции В результате плановых противоэпизоотических мероприятий \л, в частности, широкого применения живой вакцины, масштабы ее распространения в России резко сократились, Так, по данным В.А. Апалькина (2005) в Российской Федерации КЧС зарегистрирована в 2004 г, в одном пункте, а в 2005г. - в шести, где заболело и уничтожено 1213 голов свиней, Несмотря на ограниченные эпизоотические вспышки, для профилактики заболевания государство тратит колоссальные суммы на вакцинацию свинопоголовья.

В связи с этим, наряду с разработкой новых эффективных вакцин и средств диагностики, актуальным остается изыскание новых, экологически безопасных дезинфектантов.

Вопросам устойчивости вируса КЧС во внешней среде посвящено небольшое количество работ, в которых показано, что его устойчивость зависит от характера материала, в котором содержится вирус (кусочки ткани органов, кровь, моча и др.). температуры, влажности высыхания, процессов гниения По мнению П.И. Притулина, А.И. Карелина (1969) вирус КЧС весьма устойчив к воздействию внешних факторов окружающей среды, особенно низким температурам В замороженном состоянии он сохраняется многие месяцы и даже годы (XT Гизатуллин и сотр., 1973; Г Р Юсупова, 1990). К высушиванию вирус малочувствителен и сохраняет вирулентность от 3 до б лет (Г.Р Юсупова, 1990).

В настоящее время для дезинфекции при КЧС широко используют 1,0-2,5%-ный раствор едкого натра, инактивирующий вирус за 60 минут. Н.А Лагуткин (1983) установил, что химиопрепарат А-24 в концентрации 500 мкг/мл полностью инактивирует 9,0 log ККИ-Д50/мл вакцинного штамма "ЛКВНИИВВиМ" вируса КЧС, что позволяет получать лабораторные образцы концентрированной культуральной инактивированной вакцины против КЧС.

В ветеринарной практике также используют 3%-ный раствор крезола, 5%-ный раствор фенола, 2,5%-ный раствор формальдегида, хлорную известь в разведении 1:5 и 1:20 (П.И. Притулин идр,; 1969) Однако как справедливо отмечают А.З. Равилов и др. (1974), B.C. Угрюмова (1980) проблема изыскания новых эффективных препаратов для ветеринарной дезинфекции остается актуальной. Однако работ, касающихся изыскания новых средств для дезинфекции при классической чуме свиней единичны (В.Х. Павлов, 1989).

Целью наших исследования явилось изыскание новых дезинфектантов, наиболее полно обеззараживающих вирус КЧС во внешней среде.

Материалы и методы. При изучении предполагаемых дезинфицирующих средств испытуемых химических соединений применяли "Методические указания по первичному отбору дезинфицирующих средств при особо опасных инфекциях по изменению антигенной активности возбудителей, выявляемой с помощью серологических реакций" (ута ГУВ ГАПК СМ СССР по продовольствию и закупкам 5 06 1990г) Постановку РИГА осуществляли согласно наставлению, разработанному Р.Х, Юсуповым и Г X. Ильясовой (1989),

Результаты исследований. Первичному испытанию для изучения инактивирующего действия в отношении вируса КЧС подвергнуто 50 препаратов, относящихся к различным классам химических соединений, в их число входили как синтезированные препараты, так и отходы химической и нефтехимической промышленности (табл)

Из представленных в таблице данных видно, что большинство исследованных препаратов обладают инактивирующим действием на вирус КЧС. Так, из числа исследованных препаратов инактивирующими свойствами в отношении вируса чумы свиней обладали синтезированные препараты, полученные из Института органической и физической химии им. А Е Арбузова (№№ 290, 319, 321, 46, 291, 418, 461, 411, 412, Ф-761,

Перечень химических веществ, использованных для первичного испытания инактивирующего действия их на вирус КЧС

Обозначение:

Обладает инактивирующим действием на вирус КЧС; - - не обладает инактивирующим действием на вирус КЧС.

515, 516, 517, 369, 82а) и ряд других препаратов, полученных из ВНИИВСГиЭ (хлорнонизид, ДП-2, дезоксон-2, глутаровый альдегид, сульфохлорантин, гипохлорит кальция технический), и также отходы химической и нефтехимической промышленности (№ 756, ТРФН, феносмолин, сульфатно-форшатный раствор, щелочные воды, образцы №№ 1: 2, 4, упаренные щелока, гипохлорит кальция технический),

Однако, учитывая острый дефицит дезинфицирующих средств при КЧС, а производство синтезированных препаратов находится в стадии разработки, детальному изучению были подвергнуты три препарата - феносмолин, сульфатно-формизтный раствор (СФР) и натриевая сольдихлориэоциануроеой кислоты (ДП-2), которые общедоступны, однако их инактивирующая активность в отношении вируса КЧС не была изучена.

С целью определения достоверности метода первичного отбора по степени снижения или отсутствия антигенной активности, первоначальные опыты были проведены с использованием общепринятого при КЧС дезинфектанта - едкого натра.

Проведенные исследования показали, что под действием растворов едкого натра происходит снижение антигенной активности вируса, выявляемой в РИГА с использованием антительного эритроцитарного диагностикумз При этом отмечалось снижение гемагглютинирующей активности под действием 0,1-0,5%-ного раствора щелочи, а при 3%-ной и 5%-ной концентрациях реакция была отрицательной, то есть происходило полное разрушение антигенности. В соответствующих контролях реакция была положительной - гемагглютинирующая активность составляла 1:8 -1:16. Полученные результаты позволили продолжить отработку РИГА для изучения инактивирующих свойств химических веществ при КЧС

В результате исследований установлено, что феносмолин разрушает тема ггл юти пирующую активность в 0,5%-ной концентрации, снижение антигенности отмечалось уже при применении 0,1% Сульфатно-формиатный раствор более активен в отношении вируса классической чумы свиней - разрушение гемагглютинирующей активности наблюдается в 0,25%; при этом активность вируса резко снижается при применении уже 0,05%, ДП-2 по своему действию на антигенность вируса был аналогичен едкому натру. При использовании в качестве вирусного материала вирусвакцины не были установлены существенные изменения в процессе инактивации (разрушение гемагглютинирующей активности), а именно, концентрации, действующие на гемаггл юти пирующую активность, оставались на том же уровне, и при этом наиболее существенное влияние оказывал сульфатно-формизтный раствор.

Таким образом, проведенные исследования убедительно показали, что реакция непрямой гемагглютинации (РИГА) с использованием антительного эритроцитарного диагностикума позволяет определить вирусоицидное действие изучаемых химических веществ из различных классов. При этом следует отметить, что при первичном отборе (скрининге) в качестве вирусного материала можно использовать вирусвакцину против КЧС,

Литература

1 Апалькин В А Эпизоотическая ситуация по особо опасным и карантинным болезням животных // Матер, Межд симпозиума "научные основы обеспечения животных от экотоксикантов, радионуклидов и возбудителей опасных инфекционных заболеваний".-Казань -2005.-4.1 -С 3-6.

2. Гизатуллин Х.Г, Юсупов Р X. Чума свиней и современные методы ее лабораторной диагностики // Тзткнигшэдат, -Казань 1973,-173с

3. Лагуткин Н.А. Перспективы направленного синтеза и эмпирического поиска антивирусных хишопрепаратов /7 Вопросы ветеринарной вирусологии: Тезисы докладов -Покров -1983 -С.137-139,

4 Методические указания по первичному отбору дезинфицирующих средств при особо опасных инфекциях по изменению антигенной активности возбудителей, выявляемой с помощью серологических реакций: утв. ГУВ СМ СССР по продовольствию и закупкам 5.06.1990г.

5. Павлов В.Х Дисс... кандвет нзук Покров. 1989.-127с.

6. Притулин П.И., Карелин!ЛА Чума свиней, основы профилактики болезней свиней // Россельхозиздэт, Москва 1969. -С.57-70.

7 Равилов А 3., Селиванова А С, Угрюмова В С Изыскание химических соединений, оказывающих инактивирующее действие е отношении вируса ящура // Матер, докладов Всес научной конф., посвящ, 100-летию КГВИ -Казань, 1974. -T.I -С 222-225

8 УгрюмовзВС Изыскание дезинфицирующих средств при ящуре//Актуальные вопросы вет вирусологии -Казань, 1980 С. 16.

9. Юсупова Г.Р Дисс. канд, вет наук. Казань 1991.-115с,

10. Юсупов Р.Х, Ильясова ГХ. Наставление по постановке РИГА с антительным эритроцитарным диагностикумом при классической чуме евшей: утв ГУВ ГАПК СССР 4 07

журнал "Ветеринарный врач" №2 2007

Обеззараживание в очагах особо опасных инфекций (чума, холера, сибирская язва, натуральная оспа и другие) существенно отличается от дезинфекции при других, менее опасных инфекционных заболеваниях, как, например, при дизентерии, брюшном тифе, вирусном гепатите, гриппе и других респираторных инфекциях.

Важнейшими из этих особенностей являются: большой объем дезинфекционных работ; разнообразие объектов обеззараживания; сочетание дезинфекции с дезинсекцией, дератизацией и санитарной обработкой людей; вероятность проведения обеззараживания в полевых условиях, в том числе и при отрицательной температуре; срочность проведения дезинфекции, иногда до установления вида возбудителя.

В очагах больших размеров медицинская служба подразделений, частей и соединений своими силами и средствами не в состоянии провести весь комплекс дезинфекционных мероприятий, в связи с чем распоряжением соответствующего командования для этого привлекаются санитарно-эпидемиологические учреждения, специальные подразделения химических и инженерных войск, вещевая и продовольственная службы, а также личный состав подразделений.

В этих условиях на медицинскую службу возлагаются: оценка обстановки и выдача рекомендаций о средствах, способах и режимах дезинфекции, проведение обработки в медицинских пунктах и учреждениях, контроль качества обеззараживания в очагах.

При обеззараживании в очагах особо опасных инфекций используют табельные средства и общепринятые методы и режимы дезинфекции (табл. 8). Если вид возбудителя неизвестен, то обеззараживание производят по режиму, разработанному для наиболее стойких микроорганизмов (возбудитель сибирской язвы).

Все манипуляции, связанные с обслуживанием больных и работами в палатах или других помещениях, где находятся больные, медицинский персонал проводит в противочумном костюме или защитном комплекте и противогазе.

Обеззараживание проводит бригада, возглавляемая врачом (фельдшером), в состав которой входят санитарный инструктор (штатный дезинфектор) и 3 санитара (дезинфектора).

По прибытии в очаг врач (фельдшер) распределяет обязанности среди членов группы, намечает план обработки. При этом один из санитаров занимается приготовлением дезинфицирующих растворов, сбором имущества для камерной дезинфекции. Второй находится вне помещения, принимает имущество для отправки на камерную дезинфекцию и поддерживает связь. Третий санитар вместе с санитарным инструктором непосредственно проводит обработку очага.

Дезинфекции подвергают жилище и все, с чем соприкасался больной. Обрабатывают также места общего пользования, выгребные ямы, уборные, полевые ровики, куда могли попасть выделения больного. Одновременно проводят дезинфекцию и дератизацию. В помещении дезинфекцию начинают от двери, последовательно орошая потолок, стены, пол, мебель. Если в помещении обнаружены членистоногие - переносчики возбудителей особо опасных инфекций, то после обеззараживания пола помещение обрабатывают раствором хлорофоса, карбофоса, закрывают на 4 ч. и только после этого продолжают дезинфекцию.

После завершения обработки производят дератизацию, если в этом есть необходимость.

При чуме, холере, натуральной оспе и других особо опасных инфекциях, возбудители которых не обладают большой стойкостью к дезинфицирующим веществам, обеззараживание помещений и предметов осуществляют 3% раствором хлорамина или перекиси водорода, 0,5-1% раствором НС ДХЦК, 0,5-1% раствором НГК или ДТС ГК, а также 10% раствором лизола. Для обеззараживания выделений, остатков пищи и мусора применяют 5% раствор хлорамина, 3% раствор НС ДХЦК, НГК, ДТС ГК или 6-10% раствор перекиси водорода.

Обеззараживание при сибирской язве осуществляют 5% раствором НС ДХЦК, 1 % активированными растворами ДТС ГК, НГК или 10% раствором перекиси водорода с 0,5% моющих средств. Для грубой дезинфекции-побелка 20% хлорно-известковым молоком или 10% раствором НГК, ДТС ГК.

ЧУМА

Чума – острая конвенционная инфекционная болезнь, характеризующаяся тяжелой интоксикацией, высокой лихорадкой, поражением лимфатической системы, тенденцией к септицемии.

Этиология. Возбудитель чумы – Yersinia pestis, согласно совре­менным представлениям, признан как самостоятель­ный вид рода Yersinia. Имеет овоидную форму, размеры 1,0–2,0´0,3–0,7 мкм. Характеризуется полиморфизмом, грамотрицателен, спор не образует, формирует капсулу, продуцирует экзотоксин. По способности сбраживать глицерин (Г), рамнозу (Р) и образовывать нитриты (Н) Y.pestis разделены на варианты: крысиный (Г-Н+); сурчиный (Г+Н+); суслиный (Г+Н-); полевочьий (Г+Н+Р+); песчаночьий (Г+Н- – вызывает постоянную бактери­емию у песчанок). Устойчивость возбудителя чумы позволяет ему переживать в мок­роте и крови в течение нескольких месяцев, в трупах гры­зунов и людей – нескольких дней, в гное бубона – до 20–30 дней. В организме голодающих блох может сохранять жизнеспособность больше года. Микроб не выдерживает конкуренции других микроорганизмов, особенно гнилостных. Температура 50°С вызывает гибель чумной палочки в течение 30–40 мин, 70°С – 10 мин, 100°С – нескольких секунд. К воздействию дезинфицирующих средств (5% раствор фенола, 1–2% раствор хлорамина) малоустойчив.

Источник инфекции. Чума является природно-очаговой инфекцией, приуроченной к определенным географическим зонам, в пределах которых имеются благоприятные условия для расселения основных носителей и переносчиков Y.pestis. В естественных условиях носителями возбудителя чумы являются теплокровные животные, относящиеся более чем к 300 видам. Однако эпизоотическую и эпидемическую значимость в наибольшей мере представляют 5 видов грызунов – сурки, суслики, песчанки, полевки и крысы. На территориях природных очагов среди полевых грызунов с участием специфических кровососущих переносчиков (блох) обеспечивается циркуляция Y.pestis. Увеличение численности животных и переносчиков на отдельных участках приводит к развитию острых эпизоотий чумы. В ходе эпизоотии одна часть популяции грызунов погибает, а вторая – выздоравливает и приобретает устойчивость к возбудителю чумы. Эти обстоятельства приводят к снижению интенсивности эпизоотического процесса. В условиях затухания эпизоотий происходят качественные изменения свойств возбудителя. Снижается вирулентность циркулиру­ющих штаммов, появля­ются атипичные штаммы, увеличивается естественная проиммунизация популяции носителя. Наступает межэпизоотический период, когда чу­мной микроб обнаруживается с трудом или не обнаруживается совре­менными методами вообще. Постепенно давление возбудителя чумы на популяцию носителя ослабевает, так как устойчивые к нему старые особи погибают, а их место занимают новые поколения животных, восприимчивых к чуме. Чувс­твительность к чуме восстанавливается у всей популяции. Эпизоотии среди диких животных приводят к распространению возбудителя чумы на синантропных грызунов и домашних животных (верблюдов).

Инкубационный период составляет от нескольких часов до 6 дней, в среднем – 1–2 дня.

Механизм заражения – трансмиссивный, контактный, аэрозольный.

Пути и факторы передачи. В естественных условиях возбудители чумы распространяются среди грызунов с участием блох. Блохи инфицируются возбудителем чумы при питании на больных грызунах, в крови которых находятся Y.pestis. Вирулентные штаммы чумного микроба попадают в преджелудок блохи, где размножаются и формируют блок, затрудняющий дальнейшее прохождение пищи по желудочно-кишечному тракту насекомого. Такие блохи голодают и при укусе содержимое преджелудка, состоящее из чумных бактерий, попадает в ранку, обеспечивая заражение других грызунов (или человека). Большинство блокированных блох отмирает в течение 2–7 дней, но некоторые особи, будучи за­раженными, выживают до 180–360 дней и сохраняют в желудочно-ки­шечном тракте возбудителя чумы. Различают передачу возбудителей инфекции через блох от грызунов человеку и от человека к человеку. На территории, где протекает эпизоотия среди грызунов, чело­век подвергается угрозе нападения инфицированных блох. Эта опас­ность невелика, когда численность грызунов большая, но в резуль­тате резкого уменьшения последней блохи в поисках пищи нападают на человека, который для них становится случайным хозяи­ном.

Если у больного чумой развивается сепсис, сопровождающийся интенсивной бактериемией, то при наличии человеческих блох в жилище они инфицируются и через 6–10 дней (время, необходимое для образования блока) становятся способными заражать других людей. В этих случаях заболевают почти все члены семьи, у которых преимущественно развиваются бубонно-септические формы чумы.

Охотники могут заражаться чумой контактным путем, сдирая шкурки грызунов, лисиц, зайцев. При этом чаще возникает бубонная форма чумы. Особое место занимают вспышки чумы при контакте с больным верблюдом. В разделке вынужденно убитого верблюда участвует, как правило, несколько че­ловек, и мясо распределяется по нескольким семьям, в которых мо­гут появиться первые больные. Большей частью у лиц, имевших контакт с сырым мясом, развивается бубонная форма чумы.

Несмотря на зоонозную природу чумы, возможно возникновение заболеваний, связанное с передачей возбудителя от челове­ка человеку аэрозольным путем. Эти заболевания наблюдаются при по­явлении у больных вторичной чумной пневмонии, а затем и первичных пневмоний. Такие больные исключительно опасны, так как выделяют ог­ромное количество возбудителей и вспышки развиваются по типу аэрозольных антропонозных инфекций.

Исключительно редко наблюдаются случаи инфицирования людей через выделения изъязвившихся бубо­нов или язв кожи при бубонной и кожной формах чумы. Следует также иметь в виду возможность появ­ления кишечной формы чумы и опасность инфицирования через выделе­ния больного.

Восприимчивость и иммунитет. Восприимчивость человека к возбудителю чумы очень высокая. В прошлом от легочной формы чумы вымирали целые населенные пункты. Перенесенное заболевание оставляет после себя иммунитет невысокой напряженности и недостаточной продолжительности.

Проявления эпидемического процесса. Чума относится к природно-очаговым инфекциям. Природный очаг – энзоотичная по чуме территория, имеющая географические и экологические преграды для носителей, переносчиков и внутривидовых категорий возбудителя чумы. В ее пределах саморегуляция эпизоотического процесса может обеспечиваться в одной или нескольких популяциях основного носителя.

Природные очаги чумы выявлены на всех континентах, кроме Австралии и Антарктиды. Наиболее изучены: Забайкальский, Тувинский, Горно-Алтайский, Тянь-Шаньский и Памиро-Алтайский, Гиссаро-Дарвазский, Среднеазиатский равнинный, Волго-Уральский, Зауральский, Северо-Западного Прикаспия, Центрально-Кавказский, Восточно-Кавказский природные очаги.

Ежегодно в мире регистрируется несколько сотен случаев чумы человека. Заболевания преимущественно выявляются в Африке, Южной Америке и Юго-Восточной Азии. В странах тропического пояса в поддержании чумы важное значение имеют синантропные крысы, формирующие антропургические очаги этой инфекции. В среднеазиатских странах выявляются заболевания чумой, связанные с разделкой туш больного верблюда. В некоторых странах зарегистрированы заносные случаи чумы, обусловленные лицами, прибывшими из эндемичных территорий в инкубационном периоде.

Факторы риска. Нахождение на территории природного очага, недостаточность гигиенических знаний и навыков.

Профилактика. Системой профилактических мероприятий в природных очагах чу­мы предусматриваются: 1) эпидемиологическая разведка и наблюдение; 2) вакцинация населения по показаниям; 3) борьба с грызунами; 4) борьба с блохами диких и синантропных грызунов; 5) мероприятия по предупреждению заноса чумы из зарубежных стран; 6) санитарно-просветительная работа.

Главной целью эпидемиологичес­кой разведки является быстрая оценка эпидемического состояния в очаге на основе эпизоотического обследования энзоотичной по чуме территории и медицинского наблюдения за населением. Эта работа выполняется системой противочумных учреждений. Ведутся поиски локальных и разлитых эпизоотий, определяется плотность грызунов – основных носителей чумы, численность переносчиков, проводятся бактериологическое, биологическое и серологическое исследования полевого материала.

Прививки против чумы в настоящее время целесообразно проводить преимущественно в природных очагах среди лиц, подверженных опасности заражения (пастухи, чабаны, геологи). Массовая вакцинация осуществляется только по показаниям в случае возникновения острых эпизоотий в окрестностях населенных пунктов и угрозы возникновения вторичных очагов чумы среди си­нантропных грызунов. Применение вакцинации для предохранения от спорадических заболеваний чумы в природных очагах как мера профилактики малоэффективна и в настоящее время не рекомендуется.

Одним из наиболее мощных средств профи­лактики чумы в природных очагах является борьба с дикими грызунами – носителями возбудителя болезни. В настоящее время эта мера надежно и быстро подавляет эпизоотии и снижает опасность заражения человека.

Борьба с блохами – высокоэффективное профилактическое мероприятие. Полевая дезинсекция в природных очагах чумы, расположенных в зоне умеренного климата, основанная на принципе глубокой обработки нор инсектицидами, приво­дит к резкому сокращению численности блох и подавлению острых эпизоотий чумы. Несмотря на трудоемкость, такой путь борьбы с чу­мой рассматривается как достаточно перспективный.

Мероприятия по охране территории и предупреждению заноса чу­мы из природных очагов и стран, эндемичных по чуме, проводятся сетью карантинных учреждений, отделами особо опасных инфекций, лечебно-профилактическими и амбулаторно-поликлиническими учреждениями. Основу этих мероприятий составляют: 1) разработка и утверждение планов по предупреждению заноса и распространения чумы на определенной территории; 2) подготовка медицинского персонала по разделам клиники, лечения, лабораторной диагностики чумы и обеспечение его готовности к проведению профилактических и противоэпидемических мероприятий; 3) рациональное распределение функций среди медицинских учреждений; 4) слежение за эпидемической ситуацией в мире и определение потенциальной опасности заноса чумы в страну; 5) контроль на санитарно-контрольных пунктах за своевременным выявлением среди пассажиров, прибывающих в страну, больных с подозрением на чуму; 6) изоляция на 6 дней лиц, в отношении которых возникает подозрение на заражение чумой; 7) создание запасов диагностических, лечебных и профилактических средств.

Санитарное просвещение является важной частью любой програм­мы борьбы с чумой.

Противоэпидемические мероприятия – таблица 33.

Таблица 33

Противоэпидемические мероприятия в очагах чумы

Заключительная дезинфекция при чуме - Чума. Относится к группе карантинных особо опасных болезней, является антропозоонозом с многими путями передачи. Она укоренилась среди диких грызунов, обитающих в природных очагах на всех материках, кроме Австралии. На территории СССР природные очаги чумы зарегистрированы в Северо-Западном Прикаспии, Волго-Уральском междуречье, Закавказье, Зауралье, Забайкалье, Горном Алтае, Туве, Тянь-Шане, Памиро-Алае, Средней Азии и Казахстане.

По основному носителю очаги чумы подразделяются на сусликовые, сурочьи, полевочные, песчаночьи и пищуховые. Помимо диких грызунов, в эпизоотический процесс иногда включаются синантропные грызуны (крысы, мышевидные), а также дикие животные (зайцы, лисы). Из домашних животных чумой болеют верблюды.

Переносчиками возбудителя чумы являются главным образом блохи. Заражаясь от больного грызуна, блоха становится способной передавать инфекцию другому животному при попытке кровососания, после образования у нее чумного блока, т. е. закупорки преджелудка размножившимися чумными микробами. Укус одной блохи достаточен для того, чтобы вызвать смертельное заболевание грызуна. Таким образом, природная очаговость чумы обеспечивается постоянной циркуляцией возбудителя болезни по цепи грызун - блоха - грызун.

Люди заболевают чумой, как правило, в природных очагах. В современных условиях в связи с увеличением контейнерных перевозок возрастает опасность заноса чумы из одной страны в другую. Нельзя исключить также и возможности заноса инфекции больным человеком.

В природном очаге человек обычно заражается через укус блокированной блохи, ранее питавшейся на больном грызуне, причем возможность заражения резко возрастает при включении в эпизоотию синантропных грызунов. Заражение может также произойти при охоте на грызунов и снятии с них шкурок. Групповые заражения могут быть при прирезке больного верблюда, снятии с него шкуры, разделке туши. Больной чумой человек в зависимости от формы заболевания в свою очередь может осуществлять передачу возбудителя другим людям воздушно-капельным путем и через укус блох, находящихся в жилье.

При этом для легочной формы чумы характерен короткий инкубационный период (2 сут), который обусловливает возможность быстрого распространения заболевания. При трансмиссивном пути передачи инфекции (бубонная и септическая формы) интервалы между отдельными заболеваниями могут удлиняться до 10 - 15 сут.

Возбудитель чумы - грамотрицательная палочка, весьма чувствительная к действию высокой температуры и высушиванию. При температуре 50°С чумной возбудитель гибнет через 30 - 40 мин, при 70°С - в течение 10 мин, при 100°С - за 1 мин. Прямой солнечный свет убивает микроорганизм за 2 - 3 ч. Низкие температуры возбудитель переносит хорошо. Сохраняется в зараженных голодающих блохах при 0 - 15°С до 400 дней, клещах - до 500 дней, замороженных трупах - до 7 мес или даже года.

Эпидемическим очагом чумы считают отдельные домовладения, часть или весь населенный пункт или группу населенных пунктов, где обнаружены больные чумой. При выявлении заболеваний в ряде населенных пунктов действующим очагом чумы может являться административная территория района.

Врач или средний медицинский работник при обнаружении больного или подозрительного на заболевание чумой обязан прекратить дальнейший прием больных и запретить вход и выход из лечебного учреждения. Оставаясь в кабинете, палате, медицинский работник должен доступным ему способом (телефон, нарочный) доложить главному врачу о выявлении больного и потребовать противочумные костюмы и дезинфицирующие средства.

Общее руководство и контроль за проведением противоэпидемических мероприятий в очаге чумы осуществляет чрезвычайная противоэпидемическая комиссия, которая определяет объем и сроки проведения соответствующих мероприятий, устанавливает границу очага, определяет сроки введения и снятия ограничительных мер или карантина; утверждает план ликвидации очага и порядок контроля за его исполнением; оказывает административную и организационную помощь для осуществления мероприятий, предусмотренных планом; периодически заслушивает доклады начальника очага и лиц, ответственных за выполнение отдельных мероприятий; корректирует ранее принятый план противоэпидемических мероприятий на основании результатов эпидемиологического обследования.

В систему мер по локализации очага чумы входят: активное выявление и госпитализация больных чумой и подозрительных на заболевание; выявление, изоляция лиц, имевших контакт с больными, трупами умерших, мясом вынужденно забитых больных чумой верблюдов, а также зараженными вещами, выявление и захоронение трупов лиц, погибших от чумы; проведение дезинфекционных мероприятий в местах обнаружения больных, трупов, контактировавших лиц, зараженных вещей (текущая и заключительная дезинфекция); наблюдение за состоянием здоровья населения в очаге, провизорная госпитализация всех температурящих больных и больных с лимфаденитами; введение ограничительных мер или карантина; дератизация и дезинсекция в населенных пунктах и в поле; эпизоотологическое обследование зоны очага и прилегающей территории; вакцинация населения по показаниям.

После выявления больного или подозрительного на заболевание чумой его немедленно изолируют от окружающих лиц госпитализируют. Больные чумой и подозрительные госпитализируются на отдельном транспорте с соблюдением правил изоляции и дезинфекции. Медицинский работник, сопровождающий больного, должен надеть противочумный костюм I типа. Автомашина после госпитализации больного подвергается дезинфекции, а противочумные костюмы эвакобригады - обеззараживанию. Все эвакуаторы по окончании перевозки больных проходят санитарную обработку.

Дезинфекционные мероприятия в очаге чумы проводят дезинфекционные бригады очаговой и профилактической дезинфекции, созданные из прошедшего специальную подготовку персонала дезотделов СЭС или ДС. При небольшом объеме дезинфекционных работ их проводит персонал противочумных учреждений. В состав дезинфекционной бригады входят врач, дезинструктор и два дезинфектора. Работники бригады работают в противочумных костюмах I типа вне зависимости от формы болезни.

По прибытии в очаг руководитель дезинфекционной бригады определяет объем и последовательность обработки помещений, исходя из. конкретных условий (площадь, характер стен, пола и т. п.). Дезинструктор в машине или подходящем помещении вне очага готовит рабочие растворы дезсредства. Обработку каждого помещения начинают с орошения наружной и внутренней сторон входной двери, пола квартиры, для чего применяют следующие растворы: 3% хлорамина, 1% активированного хлорамина, 10% хлорной извести, 5% лизола при расходе растворов 300 мл/м 2 ; выдержка 1 ч. Так же обрабатывают стены, мебель и другие предметы.

Затем обеззараживают выделения больного (кал, мочу): их заливают 20% хлорно-известковой взвесью в двойном объеме по отношению к выделениям или смешивают с сухой хлорной известью из расчета 200 г/л или ДТС ГК 100 г/л. Можно в тех же целях заливать выделения двойным объемом растворов: 10% лизола или 5% хлорамина; выдержка во всех случаях 2 ч. Гной, мокроту заливают 10% раствором лизола или 20% хлорно-известковой взвеси в трехкратном объеме по отношению к количеству мокроты, перемешивают и выдерживают 4 ч. В тех же целях можно мокроту смешивать с сухой хлорной известью из расчета 200 г/л или с ДТС ГК - 100 г/л при выдержке 2 ч. Посуду из-под выделений погружают в растворы: 3% хлорамина, 5% лизола, 2% хлорной извести или ДТС ГК на 2 ч.

Затем белье постельное и нательное, полотенца, платки кипятят в 2% мыльно-содовом растворе 30 мин или замачивают в одном из следующих растворов: 5% лизола, 10% хлорамина в течении 2 ч. Отбивают мягкие вещи (подушки, одеяла, матрацы, ковры, кошмы, верхнюю одежду и платья больного, игрушки) для камерной дезинфекции. Их отправляют в камеру для обеззараживания по режимам, принятым для вегетативных форм микроорганизмов. Так же дезинфицируют книги, ноты, документы.

Посуду для еды, ложки, ножи, вилки собирают в емкость с крышкой и обеззараживают кипячением в 2% растворе гидрокарбоната натрия в течение 15 мин или полностью погружают на 30 мин в 2% раствор хлорамина.

После этого посуду тщательно промывают горячей водой. Остатки пищи кипятят 15 мин или засыпают хлорной известью из расчета 200 г/л, или ДТС ГК - 100 г/л, перемешивают и выдерживают 1 ч. Остатки пищи с такой же выдержкой можно заливать 20% хлорно-известковой взвесью в соотношении 1:2.

Предметы ухода за больным (инструменты, подкладные клеенки, пузыри для льда, подкладные круги, резиновые грелки и др.) кипятят 15 мин или погружают в один из следующих растворов: 3% хлорамина, 1% активированного хлорамина, 3% лизола; выдержка 1 ч. Перевязочный материал кипятят 30 мин или сжигают. Уборочный инвентарь замачивают в 5% растворе лизола или в 3% растворе хлорамина на 1 ч.

Затем орошают места общего пользования, потолки, стены, предметы обстановки и повторно полы теми же растворами, которые применяли в начале обработки для дезинфекции входных дверей и пола. Выгребные уборные, стульчаки, стены орошают одним из растворов: 5% лизола, 3% хлорамина, 20% хлорной извести, 1% ДТС ГК. Содержимое уборной обеззараживают сухой хлорной известью из расчета 1 кг/м 2 поверхности выгреба. Ровики засыпают хлорной известью и прикапывают.

После окончания заключительной дезинфекции дезбригада, выйдя из помещения, перед снятием противочумного костюма орошает дезраствором свою обувь и перчатки, а затем снимает костюмы, складывает в мешки и отправляет для обеззараживания; разрешается замачивание костюма (как и белья больных) в дезрастворе на месте. По окончании рабочего дня члены бригады проходят санитарную обработку.
читайте так-же

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для дезинфекции животноводческих помещений, дезинфекции и дезинсекции внутренних поверхностей, воздуха и оборудования в животноводческих помещениях, санитарной обработки помещений для содержания животных, птицы. Вначале осуществляют предварительную механическую очистку помещений. После чего герметизируют целлофановой пленкой весь дезинфицируемый корпус. Затем с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М» корпус внутри подогревают до температуры не менее 75°C и подают дезинфицирующий раствор 37%-ного раствора формальдегида с температурой не менее 70°C в течение 10-15 мин из расчета 10-15 мл/м 3 и выдерживают экспозицию обеззараживания в течение трех часов. Заявленное изобретение обеспечивает повышение эффективности и качества дезинфекционной обработки свиноводческих помещений при ликвидации африканской чумы свиней в очаге болезни, снижается нагрузка на окружающую среду. 1 табл., 1 пр.

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к способу дезинфекции животноводческих помещений, дезинфекции и дезинсекции внутренних поверхностей, воздуха и оборудования в животноводческих помещениях, и может быть использовано при санитарной обработке помещений для содержания животных, птицы и т.п.

Известны способы и утверждена «Инструкция по проведению ветеринарной дезинфекции объектов животноводства», ГУВ Госагропрома СССР, 25.08.1988 г., согласно которой проводят дезинфекцию помещений в присутствии животных из дезосредств в форме аэрозоля, применяют 37%-ный раствор формальдегида, 20% раствор параформа с добавлением 1% едкой щелочи, 24% раствор глутарового альдегида, 30% раствор алкамона.

Известен способ аэрозольной дезинфекции воздуха помещений в присутствии птицы в целях профилактики инфекционных болезней 0,2-0,5%-ным водным р-ром бактерицида с 20-30-%-ным р-ром формалина на курах яичных пород промышленного стада с помощью генератора САГ-1 из расчета 35-40 мл на 1 м 3 помещения. Для влажной профилактической дезинфекции животноводческих помещений и птичников проводили из установки ДУК препаратом бактерицид 0,1-0,2% концентрации из расчета 0,3-0,5 л раствора на 1 м 2 площади (патент РФ №2130321, A61L 2/18, A61L 2/22).

Известен способ влажной дезинфекции животноводческих помещений дезинфектантом, содержащим отходы производства ацетальдегида с добавлением подмыльного щелока в соотношении 1:1 и разбавленным водой 1:2 или 1:3, из расчета 500-600 мл на 1 м 2 площади и экспозиции 2-3 ч при особо опасных инфекциях - бруцеллезе и туберкулезе (патент РФ №2212900, A61L 2/00).

Однако указанные выше способы дезинфекции для ликвидации африканской чумы свиней (АЧС) не применяются.

Африканская чума свиней (АЧС) - особо опасная высококонтагиозная инфекционная болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, обширными геморрагиями и цианозом кожи, тяжелыми дистрофическими и некротическими поражениями клеток ретикулоэндотелиальной системы, внутренних органов и 100%-ной летальностью. Болеют домашние и дикие свиньи, независимо от возраста и породы. АЧС наносит огромный экономический ущерб владельцам животных из-за массовой заболеваемости, гибели животных, что существенно ухудшает эпизоотическую и экологическую ситуацию. Вирус устойчив к широкому диапазону температур, изменениям рН среды, к высушиванию и гниению. Длительное время сохраняется в объектах внешней среды и животноводческих помещениях. Основным условием локализации особо опасной болезни АЧС и ликвидации ее последствий является своевременная инактивация вирулентного возбудителя в контаминированных им объектах внешней среды: почва, вода, выдыхаемый больными животными воздух, навоз и другие.

В соответствии с действующей инструкцией «Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации африканской чумы свиней» (№115-6а от 21.11.1980 г.) в очаге при ликвидации АЧС рекомендуется проводить 3-кратную дезинфекцию помещений, загонов и других мест, где содержались животные, в следующем порядке: первую - сразу после уничтожения животных, вторую - после снятия деревянных полов, перегородок, кормушек и проведения тщательной механической очистки, третью - перед снятием карантина. Растворы наносят на дезинфицируемую поверхность установкой ДУК из расчета 1 л на 1 м 2 площади. Время обеззараживания не менее трех часов. Применяют растворы хлорной извести с содержанием 4% активного хлора, гипохлорита натрия (кальция) с содержанием 3% активного хлора или формалина с содержанием 0,5% формальдегида. Растворы этих средств наносят на дезинфицируемую поверхность из расчета 1,5 л на 1 м 2 . Время обеззараживания 24 ч.

Известна мобильная газотурбинная установка для термохимической дезинфекции животноводческих помещений «Аист-2» (патент РФ №2232602 - принимаем за прототип). Установка работает следующим образом. Предварительно в помещении проводят механическую очистку и промывку горячей водой (60°С) под давлением 2 атм. После подсушивания корпуса проводят герметизацию окон, вентиляционных люков и других отверстий. Для аэрозольной дезинфекции используют формалин (38,7% по формальдегиду) из расчета 20 мл/м 3 . Подачу дезинфицирующего раствора осуществляют с помощью установки «Аист-2М» через дверной проем, куда вводят кормовую часть эжектора. Подача препарата в помещение осуществляется в течение 3 минут. При этом весь объем помещения заполняется аэрозолем формалина, массовый медианный размер частиц аэрозоля составлял 15 мкм, после этого помещение закрывают и выдерживают экспозицию обеззараживания 24 часа. Недостатками, препятствующими получению требуемого технического результата, является то, что после предварительной механической очистки помещений проводят промывку горячей водой (60°C) под давлением 2 атм, затем после подсушивания корпуса проводят герметизацию окон, вентиляционных люков и других отверстий. Это ведет к увеличению расхода горячей воды, нагрузки на окружающую среду, риска для обслуживающего персонала и длительности процедуры процесса дезинфекции. Распыление дезинфицирующего раствора без нагрева в течение 3 минут снижает деконтаминационную активность обработки препаратом. Длительная экспозиция обеззараживания 24 часа увеличивает продолжительность дезинфекции.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является повышение эффективности и качества дезинфекционной обработки животноводческих помещений при ликвидации африканской чумы свиней в очаге болезни с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М», снижение нагрузки на окружающую среду. За счет исключения операции промывки горячей водой (60°C) под давлением 2 атм, последующего подсушивания корпуса и введения предварительного прогрева дезинфицируемого помещения внутри до температуры не менее 75°C и последующей подачи 37%-ного раствора формальдегида при температуре не менее 70°C в течение 10-15 мин из расчета 10-15 мл/м 3 и выдерживания при экспозиции обеззараживания в течение трех часов заявляемый способ позволяет исключить недостатки.

Технический результат достигается тем, что в способе термохимической дезинфекции животноводческих помещений при ликвидации африканской чумы свиней, включающем предварительную механическую очистку помещений и их герметизацию, подачу дезинфицирующего раствора с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М» путем распыления дезифектанта, выдерживание экспозиции обеззараживания, согласно изобретению осуществляют герметизацию целлофановой пленкой всего дезинфицируемого корпуса, затем с помощью мобильной газотурбинной установки нагревают корпус внутри до температуры не менее 75°C и подают дезинфицирующий раствор 37%-ного раствора формальдегида с температурой не менее 70°C в течение 10-15 мин из расчета 10-15 мл/м 3 и выдерживают экспозицию обеззараживания в течение трех часов.

Новизна заявляемого предложения обусловлена тем, что вначале весь дезинфицируемый корпус герметизируют целлофановой пленкой, нагревают его мобильной газотурбинной установкой «Аист-2М» до температуры не менее 75°C, затем в корпус подают в течение 10-15 мин 37%-ный раствор формальдегида при температуре не менее 70°C из расчета 10-15 мл на 1 м 3 , время экспозиции в течение 3-х часов.

Бактериологический контроль качества дезинфекции осуществляют в соответствии с документом «Инструкция по проведению ветеринарной дезинфекции объектов животноводства», ГУВ Госагропрома СССР, 25.08.1988 г.

По данным патентной и научно-технической литературы не обнаружена аналогичная заявляемой совокупность признаков, что позволяет судить об изобретательском уровне заявленного технического решения.

Что касается критерия «промышленная применимость», то заявляемый способ осуществляют при помощи мобильной газотурбинной установки «Аист-2М», которая запатентована в Российской Федерации (Патент РФ №2232602), лицензия №043358.

За счет предварительного прогрева дезинфицируемого помещения мобильной газотурбинной установкой «Аист-2М» внутри до температуры не менее 75°C и подачи внутрь свиноводческих помещений дезинфицирующего раствора 37%-ного раствора формальдегида с температурой не менее 70°C позволяет усилить проникающую способность аэрозоля дезинфектанта в разные труднодоступные места и участки помещения.

Введение дезинфицирующего раствора в виде аэрозоля внутрь животноводческих помещений в течение 10-15 мин дает возможность полностью заполнить весь объем помещения дезинфицирующим раствором, что позволит повысить эффективность и качество дезинфекции свиноводческих помещений.

Применение в качестве дезинфицирующего раствора 37%-ного раствора формальдегида в дозе 10-15 мл/м 3 позволяет снизить нагрузку на окружающую среду, экономить и эффективно использовать дезинфектант.

Выдержка экспозиции обеззараживания в течение трех часов дает возможность достичь полной деконтаминации от возбудителя АЧС и других микроорганизмов. Тем самым повышается эффективность и качество процесса дезинфекции в животноводческих помещениях.

Таким образом, технический результат достигается только при сочетании заявленных параметров способа термохимической дезинфекции и обеспечивает высокую степень обеззараживания животноводческих помещений при ликвидации африканской чумы свиней.

Пример конкретного осуществления способа.

После предварительной механической очистки животноводческих помещений весь дезинфицируемый корпус герметизируют целлофановой пленкой, после чего мобильной газотурбинной установкой «Аист-2М» нагревают его до температуры не менее 75°C. Затем внутрь подают дезинфицирующий раствор 37%-ного раствора формальдегида с температурой не менее 70°C в течение 10-15 мин из расчета 10-15 мл/м 3 и выдерживают экспозицию обеззараживания в течение трех часов.

Эффективность дезинфекции согласно «Инструкции по проведению ветеринарной дезинфекции объектов животноводства», ГУВ Госагропрома СССР, 25.08.1988 г., проводят путем отбора проб и бактериологического контроля в ветлаборатории (таблица 1).

Из таблицы 1 следует, что роста санитарно-показательных микроорганизмов в исследованных пробах не происходило.

Преимуществами заявляемого изобретения является способность качественно провести обеззараживание животноводческих помещений и ликвидировать африканскую чуму свиней в очаге болезни с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М». Помимо этого, снижается нагрузка на окружающую среду в связи с минимальным загрязнением окружающей среды.

Способ термохимической дезинфекции животноводческих помещений при ликвидации африканской чумы свиней, включающий предварительную механическую очистку помещений и их герметизацию, подачу дезинфицирующего раствора с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М» путем распыления дезинфектанта, выдерживание экспозиции обеззараживания, отличающийся тем, что осуществляют герметизацию целлофановой пленкой всего дезинфицируемого корпуса, затем с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М» нагревают корпус внутри до температуры не менее 75°C и подают дезинфицирующий раствор 37%-ного раствора формальдегида с температурой не менее 70°C в течение 10-15 мин из расчета 10-15 мл/м 3 , выдерживают экспозицию обеззараживания в течение трех часов.

Похожие патенты:

Изобретение относится к фармацевтической промышленности и представляет собой дезинфицирующее средство, включающее электрохимически активированный нейтральный анолит с содержанием 0,5 мг/мл активного хлора, отличающееся тем, что его разбавляют водопроводной водой в соотношении 1:5, и в состав разбавленного электрохимически активированного нейтрального анолита вводят 0,25 мг 40%-ного раствора молочной кислоты, из расчета на 1 мл препарата.

Группа изобретений относится к многостадийному способу обработки перекисных растворов для повторного использования или утилизации. Для обработки перекисного раствора осуществляют сбор первичного перекисного раствора, включающего перекись водорода или перкислоту и перекись водорода.

Изобретение относится к ветеринарной санитарии. Описано дезинфекционное средство, в котором электрохимически активированный нейтральный анолит, содержащий 0,5 мг/мл активированного хлора, разбавляют водопроводной водой в соотношении 1:5 и еще раз его разводят с салицилово-скипидарной суспензией в соотношениях соответственно 1:500 и 1:1000.

Группа изобретений относится к области медицины, ветеринарии и пищевой промышленности и предназначена для дезинфекции и стерилизации различных предметов и поверхностей.

Изобретение относится к области комбинированных составов для комплексного проведения дезактивации, дезинфекции и экспресс-обнаружения следов взрывчатых веществ на основе тетранитротолуола.

Изобретение относится к области сельского хозяйства. Описан способ дезинфекции объектов ветеринарного надзора, включающий их обработку дезинфицирующим средством, содержащим раствор оксидантов, синтезированный из раствора натрия хлорида, подвергнутого воздействию постоянного электрического тока с интенсивностью, обеспечивающей достижение величин окислительно-восстановительного потенциала +1000±50 мВ и соли металлов с последующей экспозицией, дезинфицирующее средство в качестве солей металлов содержит бишофит, а раствор оксидантов синтезирован из 5,0-10,0%-ного раствора натрия хлорида, подвергнутого воздействию постоянного электрического тока с интенсивностью, обеспечивающей достижение величин рН 5-6,5, концентрации активного хлора 0,045-0,055% при определенном соотношении компонентов.

Изобретение относится к области ветеринарии, предназначено для санации животноводческих помещений, предприятий пищевой и перерабатывающей промышленности. Дезинфицирующее средство для санации включает коллоидное серебро, стабилизированное бромидом дидецилдиметиламмония, алкилполиглюкозид, алкил-фракции С4-С10 и воду при следующем соотношении компонентов, мас.%: коллоидное серебро 0,004-0,04, бромид дидецилдиметиламмония 0,4-0,8, алкилполиглюкозид, алкил-фракции С4-С10 0,3-0,6, вода - остальное.

Изобретение относится к птицеводству. Для повышения вывода и сохранности цыплят путем обработки инкубационных яиц птицы проводят обработку их поверхности водным раствором препарата на основе молочной сыворотки с лактулозой и четвертичного аммониевого соединения при следующем соотношении компонентов, мас.%: молочная сыворотка 30-35, лактулоза 5-10, четвертичное аммониевое соединение триметилоктадецил аммония бромид 40-45, вода остальное.

Изобретение относится к дезинфекции и представляет собой состав полимерной дезинфицирующей рецептуры для создания пленок, обеспечивающих защиту и дезинфекцию поверхностей внутри гермозамкнутых объемов.

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для профилактики и лечения инфекционных заболеваний птиц. Способ включает распыление 1,3%-ного антисептического раствора препарата “Йодпротектин” в виде тумана из расчета 3,0 мл/м3 с 10-, 15-, 30-минутной экспозицией и антисептической обработкой инкубационного яйца перед закладкой в инкубатор методом орошения поверхности скорлупы из расчета 10 л на 7000 яиц. Также обрабатывают спреем внутренние поверхности выводных шкафов из расчета 1,5 литра на 30 м2 с экспозицией 15 минут. Заявленное изобретение высокоэффективно для профилактики и лечения инфекционных заболеваний птиц. 1 табл., 1 пр.

Предложено средство для терапевтического лечения и профилактики грибковых заболеваний кожи и придатков кожи, обширных и системных микозов кожи человека и животных, отличающееся тем, оно представляет собой бензилбензоат и фармацевтическую композицию, содержащую не менее 0,1 вес.% указанного средства. Показана высокая активность бензилбензоата к большинству видов возбудителей микозов, высокая терапевтическая эффективность. Изобретение может найти применение в фармацевтической промышленности, в медицине, ветеринарии, косметологии и в области средств гигиены. 2 н. и 20 з.п. ф-лы, 8 пр.

Изобретение относится к устойчивым при хранении антимикробным композициям. Композиция включают носитель и церагениновое соединение, суспендированное в носителе. Церагениновое соединение содержит стерольный скелет и несколько катионных групп, присоединенных к стерольному скелету гидролизуемыми связями. Носитель имеет значение pH, равное 5,5 или ниже. Носитель содержит ПАВ и кислоту. Для дезинфицирования поверхности на нее наносится антимикробная композиция. Поверхности, подверженные воздействию микроорганизмов, представляют собой поверхности ванной комнаты, кухни, для приготовления пищи, для упаковки пищевых продуктов, больницы и лаборатории. Антимикробная композиция, помещенная в упаковочный контейнер, является антимикробным продуктом. Обеспечивается повышение устойчивости препарата и снижение токсического действия на окружающую среду. 3 н. и 15 з.п. ф-лы, 3 ил.

Изобретение относится к фармацевтической промышленности и санитарии и может быть использовано в текстильной, пищевой промышленности, в машиностроении, в медицине и ветеринарии, в сельском хозяйстве, в воспитательных и образовательных учреждениях, в жилых помещениях, помещениях авиа-, речных (морских) и железнодорожных вокзалов, а также в других местах скопления людей и хранения продукции путем обработки полов, стен, мебели, оборудования, готового товара дезинфицирующим средством, содержащим четвертичную аммонийную соль, воду, алкилдиметилбензиламмонийхлорид, щелочной агент и спирт изопропиловый, где дезинфицирующее средство выполнено таким образом, что содержит изотопы углерода 13С и отношение количества изотопов углерода 13С к общему количеству углерода в дезинфицирующем средстве составляет от 0.005 до 0.5, кроме того, дезинфицирующее средство выполнено с возможностью применения его по назначению в виде жидкости или аэрозоли - посредством аэрозольных баллончиков, а компоненты в средстве находятся в определенном соотношении в мас.%. 9 пр.

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к биоцидной композиции для асептического хранения консервированного протезного материала из тканей животного происхождения. Биоцидная композиция для асептического хранения консервированного протезного материала из тканей животного происхождения, включающая антимикробный агент из смеси двухатомных спиртов жирного ряда, феноксиэтанола и сорбиновой кислоты, буферный и осмолярный водные растворы, в качестве буферных водных систем - системы буферов, обеспечивающие pH в диапазоне 5,0-7,0, в качестве компонента изоосмолярности буферных растворов - раствор хлорида натрия, обеспечивающий осмолярность композиции в диапазоне 260-310 мосм/л, а для повышения растворимости антимикробного агента добавляют простейшие одноатомные спирты при определенном соотношении компонентов. Вышеописанная композиция обеспечивает надежную защиту от контаминации, позволяет сократить время отмывки биопротезов от консервирующего раствора перед имплантацией и не содержит токсичных и потенциально токсичных компонентов. 8 з.п. ф-лы, 1 табл., 2 пр.

Изобретение относится к ветеринарии, а именно к ветеринарной санитарии, и предназначено для санации воздуха птицеводческих помещений в присутствии птицы. Дезинфекционное средство, включающее электрохимически активированный нейтральный анолит, который содержит 0,5 мг/мл активированного хлора, разбавляют водопроводной водой в соотношении 1:5. В состав разбавленного электрохимически активированного нейтрального анолита вводят 1%-ный раствор перекиси водорода, разбавленный 40%-ным раствором молочной кислоты в соотношении 1:100 из расчета 1 мг на 1 мл препарата. Использование изобретения позволяет снизить концентрацию активного хлора и энергозатраты при сохранении исходной высокой бактерицидной активности электрохимически активированного нейтрального анолита. 1 табл.

Группа изобретений относится к получению озонированной воды. Система для увеличения среднего времени жизни озона, растворенного в жидкости, содержит входное отверстие для жидкости, расположенное для приема жидкости в систему; катионообменную смолу на основе кислоты, флюидно соединенную с входным отверстием для жидкости, причем смола приспособлена к обмену катионов в принятой жидкости с ионами Н+ на смоле; блок растворения озона, флюидно соединенный с входным отверстием для жидкости и катионообменной смолой на основе кислоты; и выходное отверстие для жидкости, флюидно соединенное с входным отверстием для жидкости, катионообменной смолой на основе кислоты и блоком растворения озона, причем блок растворения озона и катионообменная смола на основе кислоты совместно обеспечивают получение кислой ионизированной озонированной жидкости для распределения из системы через выходное отверстие для жидкости. Помимо этого представлен способ увеличения среднего времени жизни озона, растворенного в жидкости, а также - применение системы для увеличения среднего времени жизни озона, растворенного в жидкости. Достигается снижение скорости разложения озона в жидкости. 5 н. и 21 з.п. ф-лы, 2 табл., 10 ил.

Предложенная группа изобретений относится к области санитарии и гигиены. Предложены способ преодоления устойчивости к по меньшей мере одному антибиотику у обладающей множественной лекарственной устойчивостью (MDR) грамотрицательной бактерии, способ in vitro борьбы с контаминацией участка MDR грамотрицательными бактериями и применение альгинатного олигомера для преодоления устойчивости к антибиотику у MDR грамотрицательной бактерии. Предложен продукт, содержащий альгинатный олигомер и антибиотик в виде комбинированного препарата для раздельного, одновременного или последовательного применения для преодоления устойчивости к антибиотику у MDR грамотрицательной бактерии, где указанный альгинатный олигомер имеет степень полимеризации от 2 до 100 и (1) по меньшей мере 70% остатков гулуроновой кислоты или гулуроната (остатков G) или (2) по меньшей мере 70% остатков маннуроновой кислоты или маннуроната (остатков М). Предложенная группа изобретений обеспечивает эффективное подавление развития множественной лекарственной устойчивости грамотрицательных бактерий. 4 н. и 14 з.п. ф-лы, 12 табл., 4 пр.

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для дезинфекции животноводческих помещений, дезинфекции и дезинсекции внутренних поверхностей, воздуха и оборудования в животноводческих помещениях, санитарной обработки помещений для содержания животных, птицы. Вначале осуществляют предварительную механическую очистку помещений. После чего герметизируют целлофановой пленкой весь дезинфицируемый корпус. Затем с помощью мобильной газотурбинной установки «Аист-2М» корпус внутри подогревают до температуры не менее 75°C и подают дезинфицирующий раствор 37-ного раствора формальдегида с температурой не менее 70°C в течение 10-15 мин из расчета 10-15 млм3 и выдерживают экспозицию обеззараживания в течение трех часов. Заявленное изобретение обеспечивает повышение эффективности и качества дезинфекционной обработки свиноводческих помещений при ликвидации африканской чумы свиней в очаге болезни, снижается нагрузка на окружающую среду. 1 табл., 1 пр.