Метод стерилизации режущих инструментов. Организация работы в стерилизационной. подготовка и стерилизация режущих, оптических, общехирургических инструментов. стерилизация. Выделяют три основных этапа стерилизации

С функциональной точки зрения хирургические инструменты подразделяют на обычные металлические, режущие, пластмассовые и резиновые, а также оптические. Основным регламентирующим документом по обработке медицинского инсрументария является: «Отраслевой стандарт. Стерилизации и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства, режимы ("I 42-21 - 2-85. Приказ М3 СССР от 10.06.85.). С учётом неблагоприятной эпидситуации по СПИДу ОСТ дополнен приказом ГУЗО и ЦГСЭН № 222/80 от 27.06.00. СанПиН 2.1.3.2630-10 "Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность" СанПиН 3.1.5.2826-10 «Профилактика ВИЧ-инфекции.

Согласно этим документам предполагаются следующие последовательные этапы обработки изделий медицинского назначения: дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация.

Дезинфекция проводится для того, чтобы обезопасить медицинский персонал от инфицирования при обработке инструментов после операции. Физические методы дезинфекции (кипячение, паровой и воздушный) в условиях стационара практически не применяют из-за громоздкости, недостаточной эффективности или из-за быстрого износа инструментов. В качестве химических методов применяют следующие средства: а) 3% раствор хлорамина - 60 мин; б) 6% раствор перекиси водорода - 60 мин; в) 6% раствор перекиси водорода + 0,5% раствор моющего средства - 60 мин; г) 4% раствор формалина (по формальдегиду) - 60 мин; д) 4% раствор перекиси водорода - 90 мин; е) препарат «Сайдекс» - 15 мин. Все инструменты заливают одним из этих растворов до полного их погружения. После дезинфекции их промывают проточной водой.

Предстерилизационная очистка проводится для удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. При предстерилизационной очистке выполняют последовательно следующие действия: а)замачивание на 15 мин в моющем растворе, в состав которого входят перекись водорода 3% - 156 мл, моющее средство - 5 г и вода до объёма - 1 л; б) индивидуальное мытьё каждого изделия в моющем комплексе в течение 30 сек; в) промывание проточной водой после использования моющих средств - не менее 3 мин; г) ополаскивание дистиллированной водой для смывания солей; д) высушивание инструментария до полного исчезновения влаги.

Собственно стерилизация. Применявшееся ранее кипячение сохраняет своё значение только для дезинфекции или стерилизации инструментов индивидуального пользования. Бели предыдущие этапы проводят при стерилизации любых инструментов независимо от их вида, то при непосредственной стерилизации дифференцированно используют различные методы в зависимости от вида стерилизуемого инструмента.

Обычные металлические инструменты стерилизуются в сухожаровом шкафу или в паровом стерилизаторе (автоклаве).

Стерилизация инструментов в сухожаровом шкафу производится горячим воздухом в течение 1 часа при температуре 180 С без их упаковки (открытый способ). Для контроля качества стерилизации в сухожаровом шкафу применяют следующие тест-индикаторы: гидрохинон (индикатор приобретает чёрный цвет) и тиомочевину (жёлтый цвет индикатора превращается в оранжевый).

Стерилизация в паровом стерилизаторе происходит в результате воздействия водяного пара. Он представляет собой две металлические камеры, вложенные одна в другую и герметично закрытые фронтальной крышкой. Пар из парообразователя попадает в наружную камеру, из неё во внутреннюю и затем в конденсатор. Если перекрывают выводной вентиль го внутренней камеры, то давление пара во внутренней камере начинает расти (максимально - до 2 атм.). Параллельно повышается температура пара до 132°С при 2 атм. Обычные металлические хирургические инструменты стерилизуют под давлением 2 атм. в течение 20 мин. Современные паровые стерилизаторы должны быть проходного типа, то есть иметь две фронтальные крышки на противоположных сторонах аппарата, причём располагаться эти крышки должны в разных помещениях для полной изоляции стерильного и нестерильного материала. Кроме того, паровые стерилизаторы должны быть оснащены генераторами, создающими пульсирующий вакуум для удаления из стерилизатора воздуха, который является теплоизолятором и препятствует эффективной стерилизации. Стерилизуемые в паровом стерилизаторе инструменты помещают в биксы Шимельбуша или биксы со специальным бактериальным фильтром, а также в специальные пакеты для стерилизации. Стерильные инструменты из закрытого бикса Шимельбуша могут быть использованы в течение 3 суток, из закрытого бикса, оснащённого фильтром, - в течение 20 суток. После открытия биксов или пакетов содержимое их должно быть использовано в течение 1 суток при условии соблюдения всех правил асептики.

Пакеты для стерилизации бывают нескольких видов: а) бумага креппированная, которая заворачивается в виде конверта (при отсутствии нарушений целостности упаковки она сохраняет состояние стерильности содержимого 3 суток); б) бумажная упаковка с полоской термоклея и индикатором стерилизации [ класса (невскрытая упаковка сохраняет стерильность содержимого 60 суток); в) упаковка комбинированная, у которой одна сторона сделана из ламинированной бумаги, а другая - из полиэтиленовой плёнки, имеет полоску термоклея и индикатор стерилизации I класса (невскрытая упаковка сохраняет стерильность содержимого 1 год). Упаковочные пакеты для стерилизации производят европейские фирмы Rexam (Англия), SPS - lab. (Франция), Steriking (Финляндия) и др. Стерилизацию открытым способом в паровом стерилизаторе проводить не следует!

Существуют химические (холодные) методы стерилизации инструмен-тов: 6 % раствором перекиси водорода при температуре 18°С в течение 6 часов, параформом или 16 “/сводным раствором формальдегида в герметичных камерах в течение 48 часов, 0,5 % водно-спиртовом раствором хлоргексидина в течение 5 мин., стерилизация в специальных камерах оксидом этилена РО), а также радиационная стерилизация.

Режущие металлические инструменты (скальпели, хирургические иглы, ножницы и др.) стерилизуют холодными методами, чтобы они не тупились под воздействием горячего пара. Наиболее часто применяют для этой цели перекись водорода или спиртовой раствор хлоргексидина. Ножницы допустимо стерилизовать в сухожаровом шкафу. Оптимальным является промышленная лучевая или этиленоксидная стерилизация скальпелей и атравматического шовного материала однократного применения.

Пластмассовые, резиновые и оптические инструменты. Стерилизация резиновых и пластмассовых изделий возможна термическим методом в паровом стерилизаторе под давлением 1,1 атм. в течение 45 мин. В настоящее время используют перчатки однократного применения, стерилизованные промышленным лучевым методом, однако в экстремальных условиях стерилизовать резиновые перчатки можно автоклавированием. Для химического метода стерилизации используют пары формалина, этанол, этиленоксид и др.

Помимо газовой стерилизации оптических приборов (эндоскопы) применяют 0,5 % спиртовой раствор хлоргексидина, первомур или сайдекс.

1.2.2. Стерилизация перевязочного материала и операционного белья. К перевязочному материалу и белью относят большие и малые марлевые салфетки, марлевые тампоны, другие специальные марлевые и ватные изделия, а также простыни, пелёнки и халаты. Набор материала для автоклавиро- вания называется укладкой. Паровая стерилшация производится в биксах Шиммельбуша, металлических биксах с фильтрами, а также в х/б простынях или пелёнках. Биксы снабжены этикетками, на которых должна быть информация о содержимом бикса и принадлежности его к той или иной операционной или перевязочной. Процесс подготовки перевязочного материала к операции или перевязке подразделяют на 3 этапа.

I этап предстершизационная подготовка материала. Марлевое полотно нарезают на куски различной величины в зависимости оттого, что предстоит изготовить - малые салфетки, большие салфетки, тампоны и т.п. Марля должна быть мягкой и гигроскопичной. Перевязочный материал складывают так, чтобы свободные края были заправлены внутрь салфеток или тампонов.

II этап - укладка и подготовка материала к стерилизации. Существуют 3 основных вида укладки биксов. Универсальная укладка обычно используется при работе в перевязочных и для малых операций. Материал при этом укладывают в биксы секторами (в один сектор - малые салфетки, и другой - большие салфетки, в третий - тампоны и т. д.), чтобы не приходилось нарушать стерильность при поиске того или иного вида материала. Целенаправленная укладка включает всё необходимое для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций (укладка для трахеостомии, для катетеризации подключичной вены, для перидуральной анестезии и др.). В бикс укладывают все необходимые инструменты, перевязочный материал и бельё. Видовая укладка используется при работе в больших операционных блоках. При этом в бикс укладывают один вид перевязочного материала или белья (в один - халаты, в другой - простыни, в третий - салфетки и т.д.).

В настоящее время всё шире используется операционное бельё однократного применения из нетканого материала (простыни, пелёнки халаты, шапочки и маски), а также упаковки с марлевыми салфетками промышленной лучевой стерилизации.

III этап - стерилизация. Стерилизация белья проводится паровым методом под давлением 2 атм. при температуре 132°С в течение 20 мин. Перед загрузкой в автоклав проверяют, открыты ли отверстия в биксе. После стерилизации отверстия в биксе в процессе извлечения его из автоклава закрывают металлической вращающейся лентой на корпусе бикса и отмечают на нём дату стерилизации.

ОБРАБОТКА РУК ХИРУРГА

Обработка (мытье) рук хирурга - очень важная процедура. Существуют определенные правила мытья рук. Последовательно нужно осуществить: механическую и химическую (обезжиривание) обработку, воздействие антисептических средств и дубление (закрытие пор для поддержания стерильности поверхности кожи).

Современные способы обработки рук не требуют специального дубления (используются пленкообразующие антисептики или антисептики с элементом дубления).

Механическая и химическая обработка

Механическая и химическая обработка проводятся посредством мытья рук под краном со щеткой и мылом. Руки тщательно моются от кончиков пальцев до верхней трети предплечья. При этом соблюдается определенная последовательность обработки, в основе которой лежит принцип «не касаться обработанными участками рук менее чистой кожи и предметов».

Применение современных способов допускает мытье рук просто с мы-лом или с помощью жидких моющих средств (при отсутствии бытового загрязнения рук).

ТЕМА 15.

ОРГАНИЗАЦИЯ РАБОТЫ В СТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ. ПОДГОТОВКА И СТЕРИЛИЗАЦИЯ РЕЖУЩИХ, ОПТИЧЕСКИХ, ОБЩЕХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ. СТЕРИЛИЗАЦИЯ

ШОВНОГО МАТЕРИАЛА

Подготовка и стерилизация инструментов

Этап I – предстерилизационной подготовки. Ее цель – тщательная механическая очистку инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита.

Порядок предстерилизационной подготовки инструментария:

Дезинфекция;

Замачивание в мыльно-перекисном растворе на 15 минут при температуре 50°С;

Мытье в течение 30 с в мыльно-перекисном растворе с помощью ватно-марлевого тампона;

Полоскание под проточной водой в течение 30 с;

Полоскание дистиллированной водой;

Просушка;

Пробы на качество предстерилизационной подготовки (пробы на наличие моющих средств, пробы на наличие остатков крови, пробы на наличие остатков жира).

Этап II – укладка и подготовка к стерилизации. После предварительной просушки на воздухе инструменты укладываются для сушки в сухожаровой шкаф, который нагревают до 80 °С при открытых дверях. Затем двери шкафа закрывают и начинают стерилизацию.

Этап III – стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев, игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафныхстерилизаторах. После закрытия дверей шкафа температуру доводят до +160 °С или +180 °С, поддерживая ее автоматически. Стерилизация длится 60 минут при +180 °С или 150 минут при 160 °С. После отключения системы подогрева и понижения температуры до +70-50 °С двери шкафа открывают и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами.

Стерилизацию инструментов, содержащих пластмассовые детали (например, кассеты со скрепками), шприцев можно делать в паровомстерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если они положены в биксы, то их части должны быть открыты. Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 минут при 2 атм. и температуре +132,9 °С. Время началастерилизации отсчитывают от достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм. и температуре +120 °С в течение 45 минут или при 0,5 % атм. и температуре + 110 °С в течение 180 минут. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением не применяется согласно ОСТ 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения".

Стерилизацию инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапараскопы, аппаратыили блоки аппаратов для искусственного кровообращения, гемосорбции), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы для стерилизации помещают в герметичную стерилизационную камеру, которую наполняют окисью этилена. Срок экспозиции – 16 часов при температуре 18 °С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромистого метилена при температуре +55 °С в течение 6 часов.

Этап IV – сохранение стерильных материалов. Их хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материалов в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 часов, а при дополнительной упаковке материала в хлопчатобумажный мешок – 72 часа. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Приготовления моющих и дезинфицирующих растворов

Современные средства используются для:

– Дезинфекции.

– Совмещение дезинфекции и предстерилизационной обработки инструментов, гибких и жестких эндоскопов.

– Дезинфекции лабораторной посуды.

Для проведения дезинфекции используются:

1. Дезактин 2,0 г на 1 л для текущей уборки (0,2 % раствор) 10,0 г на 1 л для генеральной уборки (1,0 % раствор).

2. Неохлор 6 мл на 1 л для текущей уборки (0,05 % раствор) 29 мл на 1 л для генеральной уборки (0,25 % раствор).

3. Хлорантоин 2,0 г на 1 л для текущей уборки (0,2 % раствор) 10,0 г на 1 л для генеральной уборки (1,0 % раствор).

4. Дезэффект 23 мл на 1 л для текущей уборки (2,3 % раствор) 38 мл на 1 л для генеральной уборки (3,8 % раствор).

5. Максисан 1,7 мл на 1 л для текущей уборки (0,17 % раствор) 2,5 мл на 1 л для генеральной уборки (0,25 % раствор).

6. Септодор-форте 0,25 мл на 1 л для текущей уборки(0,025 % раствор) 2,0 мл на 1 л для генеральной уборки (0,2 % раствор).

7. Корзолекс плюс (только для инструментов) 30 мл на 1 л (3 % раствор).

8. Корзолекс Базик (только для инструментов) 20 мл на 1 л (2 % раствор).

9. Корзолекс экстра 15 мл на 1 л для текущей уборки (1,5 % раствор) 20 мл на 1 л для генеральной уборки (2,0 % раствор).

10. Бациллоцид расант 2,5 мл на 1 л для текущей уборки(0,25 % раствор) 5,0 мл на 1 л для генеральной уборки (0,5 % раствор).

11. Бланидас 2,0 г на 1 л для текущей уборки и инструментов (0,2 % раствор) 10,0 г на 1 л для генеральной уборки (1 % раствор).

Пробы на качество предстерилизационной обработки инструментов

Качество предстерилизационной обработки оценивают путем выполнения проб:

– на наличие крови (бензидиновая, азопирамовая и амидопириновая пробы);

– на наличие моющих средств (фенолфталеиновая проба);

– На наличие жира (проба с суданом III).

Контроль за качеством предстерилизационной обработки осуществляется:

– СЭС и дез.станцией не реже одного раза в квартал,

– самоконтроль зав. централизованной стерилизационной 1 раз в день.

Проверяют 1 % от каждого наименования изделий, подлежащих обработке за одну смену.

1.Азопирамовая проба (на наличие крови).

На 1 л раствора: 100 г азопирама, 1,0-1,5 г солянокислого анилина, 96 % этиловый спирт до 1 л.

Готовый раствор хранится в плотно закрытом флаконе в темноте при температуре +4 °С (в холодильнике) 2 месяца, при комнатной температуре (+18- +23 °С) не более 1 месяца.

Допустимо пожелтение реактива без формирования осадка.

Рабочий раствор готовят перед постановкой пробы, смешивая азопирам и 3 % перекись водорода в равных пропорциях. Рабочий раствор пригоден 1-2 часа.

Нельзя проводить пробу на горячих инструментах, хранить раствор при ярком свете, рядом с нагревательными приборами и при повышенной температуре.

Проверка рабочего раствора азопирама: 2-3 капли раствора наносят на пятно крови.

Если через 1 минуту появляется фиолетовая окраска, реактив годен к применению.

Если через 1минуту окраски нет, реактив не пригоден.

Постановка пробы: 2-3 капли реактива наносят на инструменты или протирают их марлевой салфеткой, смоченной реактивом.

Проба является положительной, если через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание.

Если инструменты загрязнены ржавчиной и хлорсодержащими окислителями, появляется бурая окраска.

В шприц вносят 3-4 капли, несколько раз продвигают поршнем, чтобы смочить всю внутреннюю поверхность, реактив оставляют на1 минуту. После чего сливают его на марлевую салфетку. Иглы проверяют, пропуская через них реактив, выдавливая его на марлевые салфетки. Катетеры проверяют, заполняя их полость реактивом полностью из чистого шприца или пипетки, оставляют на 1 минуту. Затем выжимают на марлевую салфетку.

Качество предстерилизационной обработки эндоскопов:

– проверяют инструментальный канал, внешнюю поверхность рабочей части эндоскопа;

– в отверстие "вход" и "выход" вводят на небольшую глубину ватный жгутик, смоченный реактивом, оставляют на 1 минуту. Наружную поверхность протирают марлевой салфеткой 5×5 см, смоченной реактивом.

2. Амидопириновая проба (на наличие крови).

Реактив готовят перед применением. Смешивают 5 % спиртовой раствор амидопирина, 30 % раствор уксусной кислоты и 3 % раствор перекиси водорода в равных пропорциях.

Проба положительна, если сразу или через 1 мин после нанесения реактива появляется сине-фиолетовое окрашивание. При постановке азопирамовой и амидопириновой проб окраска, которая появляется позже, чем через 1 минуту, не учитывается.

3.Фенолфталеинова проба (на наличие остатков щелочей моющих средств).

Готовят 1 % спиртовой раствор фенолфталеина.

Готовый раствор хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике 1 месяц.

Проба положительна, если после обработки реактивом появляется розовая окраска. Это свидетельствует о наличии остатков щелочей от моющих средств.

4.Проба с суданом III (на наличие жира).

Приготовление раствора: 0,2 г судана III, 0,2 г метиленового синего растворяют в 70 мл 96 % этилового спирта, подогретого на водяной бане до 60 °С, затем добавляют 10 мл 20-25 % раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды. Готовый раствор хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике 6 месяцев. Постановка пробы: 3-5 мл реактива наносят на инструменты (внутрь шприцев), через 10 с краску смывают водой. Желтые пятна указывают на наличие жировых загрязнений. При положительном результате любой из проб вся партия инструментов подлежит повторной обработке.

Методы стерилизации режущих, оптическихи общехирургических инструментов

Стерилизация режущих инструментов, обернутых в два слоя специальной бумаги, проводится сухожаровым методом при температуре +180 °С. Стерилизация инструментов и оптических аппаратов (лапараскоп, торакоскоп) может быть проведена в спиртовом растворе первомура, 2,5 % растворе глутарового альдегида в течение 360 минут или в растворе препарата "Сайдекс" в течение 60 минут. Стерилизацию аппаратов и инструментов химическими средствами следует проводить в металлических коробках с крышкам, что бы предупреждть испарение препарата. При отсутствии специальной посуды стерилизуют в эмалированной или стеклянной посуде. Инструменты заливают раствором так, чтобы он полностью покрывал их, и закрывают крышкой. В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов по одному из указанных способов, используют стерилизацию инструментов обжигом. В металлический лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и спирт поджигают. Метод выжигания недостаточно надежен, пожарно- и взрывоопасен (наличиекислорода, пара наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому его используют в исключительных случаях, строго соблюдая правила противопожарной безопасности.

Виды шовного материала

Шовные материалы классифицируются на:

I. Рассасывающиеся:

а) животного происхождения (кетгут, коллаген);

б) растительного происхождения – на основе целлюлозы (окцелон, кацелон)

в) синтетические материалы:

– на основе полигликолидов (полисорб, викрил, дексон, максон);

– полидиоксанон;

– полиуретан.

2. Материалы, которые рассасываются медленно: шелк, полиамид (капрон).

3. Материалы, которые не рассасываются :

а) полиэфиры (лавсан, суржидак, мерсилен, етибонд);

б) полиолефины (суржипро, пролен, полипропилен, суржилен);

в) фторполимеры (гортекс);

г) поливинилиден (корален);

д) металлическая проволока, металлические скобы.

Методы стерилизации шовного материала

Для соединения тканей во время операции используют нити различного происхождения, металлические скрепки, скобки, проволоку. Существует более 40 видов шовных материалов. Наибольшеераспространение имеют шелк, лавсан, капрон, кетгут, металлические скрепки. Применяют рассасывающиеся нитки и не рассасывающиеся нитки. К природным рассасывающимся ниткам относятся нитки из кетгута. Продление сроков рассасывания кетгута достигается импрегнацией его металлами (хромированный, серебренный кетгут). Используют синтетические рассасывающиесянитки – нитки из дексоната, викрила, окцилона и т.п. К натуральным нитям, которые не рассасываются,относятся нитки из натурального шелка, хлопка, конского волоса, к синтетическим – нитки из капрона, лавсана, дакрона, нейлона, фторлона и т.п.

Шовный материал должен удовлетворять следующим основным требованиям: иметь точную, ровную поверхность и не вызывать дополнительного повреждения тканей, иметь хорошие манипуляционные свойства – хорошо скользить в тканях, быть эластичным (иметь достаточное растяжение, предупреждать сжатие и некроз тканей при их нарастающем отеке), быть крепким в узле; не иметь гигроскопических свойств и не разбухать, быть биологически совместимым с живыми тканями и не давать аллергического воздействия на организм. Разрушение нитей должно совпадать со сроками заживления раны.

Нагноение раны происходит значительно реже при использовании шовных материалов, имеющих антимикробную активность за счет введенных в их структуру противомикробных препаратов (летилан-лавсановые, фторлоновые, ацетатные и другие нитки, содержащие нитрофурановые препараты, антибиотики и т.п.). Синтетические нити, содержащие антисептические средства, имеют все преимущества шовных материалов и в то же время имеют антибактериальное действие.

Шовный материал может быть простерилизован излучением в заводских условиях. В ампулах мотки шелка, кетгута, капрона хранят при комнатной температуре и используют по мере необходимости.

Лигатурный материал стерилизуют паром под давлением 2,0 атм. в течение 20 минут или при 1,1 атм. течение 45 минут. Неиспользованный материал может быть однократно перестерилизован при 1,1 атм. течение 45 минут.

Возможна экспресс-стерилизация в 4,8 % растворе первомура при температуре 18-20 °С в течение 15 минут в закрытой эмалированной посуде.

Стерилизация кетгута . Термическая обработка кетгута не применяется. В заводских условиях его стерилизуют ионизирующими лучами. Методы стерилизации кетгута химическими способами предусматривают предварительное обезжиривание, для чего свернутыекольца кетгута помещают в герметично закрытые банки с эфиром на 24 часа.

При стерилизациипо Клаудиусу сливают из банки эфир и кольца кетгута заливают водным раствором Люголя (йода чистого 10 мл, йодида калия 20 мл, дистиллированной воды до 1000 мл) на 10 суток, затем заменяют раствор Люголя свежим и снова оставляют в нем кетгут на 10 суток. После этого раствор Люголя заменяют 96 % спиртом. Через 4-6 суток производят посев на стерильность.

Метод Губарева предусматривает стерилизацию кетгута спиртовым раствором Люголя (чистого йода и йодида калия по 10 мл, 96 % этилового спирта до 1000 мл). После обезжиривания эфир сливают, и кетгут заливают раствором Люголя на 10 суток, после замены раствора новым кетгут оставляют в последнем еще на 10 суток. После бактериологического контроля, при благоприятных результатах, разрешают использование материалов.

Метод Ситковского. После обезжиривания в стерильных условиях стандартные нитки кетгута разрезают на 3 части по 1,25 м длиной, протирают раствором сулемы 1:1000 и сворачивают в кольца, которые опускают в 2 % водный раствор йодида калия: для ниток № 0 – на 30 с, для № 1 – на 1 минуту, № 2 – 2 минуты, № 3 – 3 минуты и т.п. (время в минутах соответствует номеру нитки). После пропитки ниток йодидом калия кольца кетгута нанизывают на толстые нитки и подвешивают на расстоянии 7-8 см от дна стеклянной банки, на которое насыпают кристаллический йод из расчета: в банку емкостью 3 л – 40 г йода, емкостью 5 л – 60 г йода. Банки герметично закрывают. Сроки экспозиции кетгута различны в зависимости от толщины нитей (№ 0, № 1 готовы через 3 суток, № 2, № 3, № 4 – через 4 суток, № 5, № 6 – через 5 суток). После бактериологического контроля нитки пригодны к использованию.

Способы контроля стерильности (обязанности в ходе стерилизации)

Методы контроля стерильности подразделяются на прямые и косвенные.

Прямой метод контроля является результатом бактериологического исследования (наиболее точный метод):

Методика:

– специальным стерильным тампоном проводят по стерильным инструментам, коже рук хирурга, операционному полю и др.;

– тампон помещают в стерильную пробирку и направляют в бактериологическую лабораторию, где делают посев на различные питательные среды.

Косвенные методы (используются в основном при термических способах стерилизации: они определяют величину температуры, при которой проводилась обработка, не давая точного ответа о присутствии или отсутствии микрофлоры), используются при каждой стерилизации.

20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt

Количество слайдов: 20

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_3.jpg" alt=">Методы стерилизации хирургических инструментов Подвергаться обязательной стерилизации должны: - предметы, которые соприкасаются с поверхностью"> Методы стерилизации хирургических инструментов Подвергаться обязательной стерилизации должны: - предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран, имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами - диагностическая аппаратура, которая соприкасается со слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_4.jpg" alt=">Методы стерилизации хирургических инструментов Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют"> Методы стерилизации хирургических инструментов Перед стерилизаций инструменты протирают, удаляя с них вазелин, и проверяют их исправность. Инъекционные иглы после удаления смазки промывают эфиром или спиртом. Сложные инструменты (ножницы, иглодержатели, гемостатические пинцеты) стерилизуют полураскрытыми или в разобранном виде. Режущие и колющие инструменты обвёртывают марлей для предохранения от затупления. Стерилизация инструментов – первый шаг на операции

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_5.jpg" alt=">Алгоритм стерилизации хирургического инструментария І этап - подготовительный. Цель - подготовка инструментов к стерилизации."> Алгоритм стерилизации хирургического инструментария І этап - подготовительный. Цель - подготовка инструментов к стерилизации. Проводят замачивание инструментария в моющем растворе, мытье в моющем растворе с помощью щеток, тщательное промывание проточной водой, ополаскивание дистиллированной водой, высушивание; ІІ этап - основной. Цель - собственно стерилизация. Стерилизация инструмента осуществляется горячими и холодными методами. ІІІ этап - заключительный. Цель - контроль качества стерилизации. Проводят с помощью химических индикаторов, которые отображают уровень необходимой для стерилизации температуры, которые закладываются в шкаф вместе с инструментом, или бактериологическим методом - проводят посев из инструментов на питательную среду.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_6.jpg" alt=">Методы, средства и режимы стерилизации Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит"> Методы, средства и режимы стерилизации Выбор того или иного метода стерилизации конкретных изделий зависит от особенностей изделия и самого метода – его достоинств и недостатков. Самые распространенные методы – паровой и воздушный.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_8.jpg" alt=">Паровой метод стерилизации Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют"> Паровой метод стерилизации Стерилизующий агент – горячий пар под давлением. Для этого метода используют автоклав. Упаковки: биксы, крафт-пакеты, бумага-ламинат, бязь. Материалы: полимеры, стекло, латекс, ткань, коррозийностойкие металлы. Достоинства: высокая проницаемость пара, большой выбор упаковки, дольше сохраняется стерильность, дешевый и простой в использовании метод. Недостатки: увлажнение изделий, вызывает коррозию металлов.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_9.jpg" alt=">Паровой метод стерилизации Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра. Существует три"> Паровой метод стерилизации Работа автоклава контролируется показателями манометра и термометра. Существует три основных режима стерилизации: при давлении 1,1 атмосферы - 1 час, при давлении 1,5 атмосферы - 45 минут, при давлении 2 атмосферы - 30 минут.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_10.jpg" alt=">Воздушный метод стерилизации Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизующий агент"> Воздушный метод стерилизации Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах - сухожаровых шкафах-стерилизаторах. Стерилизующий агент – сухой горячий воздух (160-200oС). Упаковки: крафт-пакеты, бязь. Материалы: металл, текстильные изделия. Достоинства: дешевый, простой метод, не вызывает коррозии металла, не происходит увлажнения упаковки и изделий. Недостатки: ограниченный выбор упаковки, медленное и неравномерное прогревание изделий, необходимость использования более высоких температур, невозможность использовать материалы из резины, полимеров.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_11.jpg" alt=">Воздушный метод стерилизации Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30"> Воздушный метод стерилизации Инструменты укладывают на полки шкафа-стерилизатора и вначале высушивают в течение 30 минут при температуре 80°С с приоткрытой дверцей. Стерилизация осуществляется при закрытой дверце в течение 1 часа при температуре 180°С. После этого при остывании шкафа-стерилизатора до 50-70°С дверцу приоткрывают и при окончательном остывании разгружают камеру со стерильным инструментарием.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_12.jpg" alt=">Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов"> Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время в хирургической клинике для стерилизации инструментов не используется. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем. Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_13.jpg" alt=">Обжигание и кипячение Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты"> Обжигание и кипячение Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости. Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия - до 2% раствора). Обычное время стерилизации - 30 минут с момента закипания. После окончания стерилизации сетку с инструментами достают с помощью специальных стерильных ручек.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_15.jpg" alt=">Газовый метод стерилизации Для этого метода используют газовые стерилизаторы. Стерилизующий агент – формальдегид или"> Газовый метод стерилизации Для этого метода используют газовые стерилизаторы. Стерилизующий агент – формальдегид или этилен-оксид. Упаковки: бумага-ламинат, пергамент, крафт-бумага. Материалы: полимеры, стекло, металл. Достоинства: невысокая температура, использование любых материалов. Недостатки: токсичность для персонала и взрывоопасность при несоблюдении техники безопасности, продолжительный цикл стерилизации.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_16.jpg" alt=">Газовый метод стерилизации Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария,"> Газовый метод стерилизации Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_17.jpg" alt=">Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных"> Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Радиационный метод необходим для стерилизации изделий из термолабильных материалов. Стерилизующий агент – ионизирующие γ и β излучения. Упаковки: помимо бумажных используют пакеты из полиэтилена. Достоинства: надолго сохраняется стерильность в упаковке. Недостатки: дороговизна метода. Радиационный – основной метод промышленной стерилизации. Используется предприятиями, выпускающими стерильные изделия однократного применения.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_18.jpg" alt=">Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации"> Радиационный метод стерилизации (лучевая стерилизация) Используются изотопы Со60 и Cs137. Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной - до 20-25 мкГр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится). Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку).

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_19.jpg" alt=">Стерилизация растворами антисептиков Стерилизация растворами химических антисептиков не приводит к затуплению инструментов, в"> Стерилизация растворами антисептиков Стерилизация растворами химических антисептиков не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов. Для стерилизации в основном используют три раствора: тройной раствор*, 70° этиловый, 6% перекись водорода. В последнее время для холодной стерилизации оптических инструментов стали применять спиртовой раствор хлоргексидина, первомур и другие. Тройной раствор: карболовая кислота - 3 г, формалин - 20 г, сода - 15 г, вода - 1000 мл.

Src="http://present5.com/presentacii-2/20171208%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov.ppt%5C20812-pr2-4_sterilizaciya_hirurgicheskih_instrumentov_20.jpg" alt=">Стерилизация растворами антисептиков Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде"> Стерилизация растворами антисептиков Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в один из указанных растворов. При замачивании в спирте и тройном растворе инструменты считаются стерильными через 2-3 часа, в перекиси водорода - через 6 часов. Считаю этот метод самым оптимальным для использования «в поле».

Стерилизация хирургических инструментов

хирургический автоклавирование антисептический

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды - стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов - 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа. Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180 - 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты - 3 части, едкого натра - 15 частей, формалина - 20 частей, дистиллированной воды - 1000 частей; формалина - 20 частей, фенола чистого жидкого - 1,5 части, карбоната натрия - 7,5 части, воды дистиллированной - 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45-50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация - суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами - в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6-8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) - 100 г., нашатырного спирта - 50 мл, воды - 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части - контрольные стекла и капельницы - промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно - проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30-40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, так как они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей - интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок - осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида, водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5-2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15-30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части - переходные трубки, щипцы, зубные распорки - стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением.

Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30-40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов - производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке. Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде - 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150-160° - 1 час. Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.

Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12-24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.

Часто применяют модификации способа Кохера.

1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№0-4 в течение 15 мин., №5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.

Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала - кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№0-1 на 30 сек., №2-5 на 1 мин., №6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке - 40 г., в 5-литровой банке - 60 г.). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным №0-1 - через 3 суток, №2-4 - через 4 суток, №5-6 - через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г. чистого йода и 10 г. калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.

Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г. йода и 10 г. калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г. калия йодида и 10 г. чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток - в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.

Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: металлические (режущие и нережущие), резиновые и пластмассовые,

оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных режимах. Стерилизация режущих металлических инструментов
Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность.
Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стерилизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180- 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным. Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды. Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде.